Microbiología clínica bloque I

Cuál de las siguientes opciones se corresponden con barreras primarias en un laboratorio de microbiología?. Equipos de protección individual (EPIs). Todas son correctas. Diseño y construcción de la instalación. Cabinas de flujo laminar.

En relación con la transmisión parenteral, selecciona la respuesta correcta. Para evitarla hay que reencapsular las agujas hipodérmicas antes de desecharlas. Se produce cuando manipulamos objetos corto-punzantes. Los guantes son la mejor manera de protección. Se produce cuando centrifugamos muestras en recipientes no herméticos.

En relación con los grupos de riesgo que clasifican a los agentes biológicos, selecciona la respuesta correcta. Los agentes del grupo 1 son los más peligrosos. Los agentes del grupo 4 son los más peligrosos. Cada laboratorio realiza su propia clasificación. Los agentes de los grupos 1, 2 y 3 tienen poco riesgo para los seres humanos.

Los organismos empleados en la industria de la alimentación, como _Lactobacillus_, corresponden al nivel de contención. NCB-1. NCB-2. NCB-4. NCB-3.

Para el manejo con seguridad de productos químicos en el laboratorio es importante. Manejarlos en CBS (cabinas de seguridad biológica). Tener a mano la ficha de seguridad del producto. Estar en contacto con el Colegio Oficial de Químicos de la comunidad. Conocer la composición y el proceso de fabricación de los mismos.

Para el transporte y envío de muestras biológicas se necesitan, según el RD 65/2006, modificado por la orden SAS/3166/2009. Un recipiente sólo, mientras sea hermético. Ninguna es correcta. Dos recipientes: primario y secundario. Tres recipientes: primario, secundario y externo.

Para evitar el riesgo de inhalación de aerosoles se usan: Gafas de protección. Bata. Mascarillas. Guantes.

Sabiendo que el virus de Lassa es un agente biológico del grupo 4, ¿qué tipo de CSB sería apropiada para trabajar con él en su interior?. CSB de Clase I. CSB de Clase II. Cabinas de Flujo Laminar. CSB de Clase III.

Señala en qué grupo de residuos se clasifican los citotóxicos: Grupo V. Grupo VII. Grupo III. Grupo VI.

Señala la respuesta correcta sobre CSB: Todas las CSB protegen el material con el que se trabaja. Existen hasta 4 tipos (I, II, III y IV). Las CSB de Clase II sólo protegen frente a agentes del grupo 2. Todas ellas protegen al operador y la zona que le rodea.

En relación con la Familia Enterobacteriaceae o enterobacterias: Muchas se encuentran el tracto intestinal. Son cocos Gram+. Son un tipo de micoplasmas. No tienen interés clínico.

En relación con la tinción de Gram, selecciona la respuesta incorrecta: Se usa para la taxonomía y clasificación de las bacterias. Las bacterias Gram+ se tiñen de azul-violeta. No es una técnica muy utilizada en microbiología. Las bacterias Gram- se tiñen de rojo-rosa.

En relación al crecimiento bacteriano selecciona la respuesta incorrecta. El crecimiento bacteriano sigue la fórmula Nt = N0 x 2n. El crecimiento tiene una fase exponencial o logarítmica. Es un término que hace referencia al aumento de individuos de una población bacteriana. Se basa en el aumento de tamaño de las bacterias.

Indica cuál de los siguientes géneros de bacterias no es un bacilo Gram-. Género Listeria. Género Pseudomonas. Género Vibrio. Género Haemophilus.

Indica cuál de los siguientes géneros de bacterias no es un coco Gram+: Género Enterococcus. Género Staphylococcus. Género Streptococcus. Género Pseudomonas.

¿En qué se diferencian las células procariotas (bacterias) de las células eucariotas humanas?. Es muy difícil diferenciarlas porque ambas son microscópicas. Ambas tienen núcleo, pero solo las bacterias tienen pared celular. Ambas tienen pared celular, pero solo las células eucariotas tienen núcleo. A diferencia de las células eucariotas, las bacterias no tienen núcleo, pero sí tienen pared celular.

Las esporas bacterianas son: Un tipo de reproducción bacteriana. Una forma por la que pasan todas las bacterias a lo largo de su ciclo vital. Una forma de resistencia bacteriana. La fase en la que las bacterias están más activas metabólicamente.

Selecciona la característica que NO representa a las Cocos Gram-: Se tiñen de color azul-violeta. Muchas de las bacterias que forman este grupo forman diplococos. Dos de los géneros más importantes son Neisseria y Moraxella. Son bacterias con forma esférica.

Si una bacteria puede sobrevivir en presencia de oxígeno, pero no lo usa porque su metabolismo es anaerobio, nos referimos a: Una bacteria anaerobia facultativa. Una bacteria anaerobia estricta. Una bacteria aerotolerante. Una bacteria microaerófila.

Señala la respuesta incorrecta respecto al Staphylococcus saprophyticus: Pertenece a la misma especie que Staphylococcus aureus. Es un microorganismo Gram positivo. Infecta el tracto urinario de las mujeres sexualmente activas. Pertenece al mismo género que S. aureus.

El objetivo de la fijación es: Mantener los microorganismos lo más parecidos a su estado vivo. Todas las respuestas son correctas. Evitar que las bacterias móviles se desplacen en la preparación. Destruir las bacterias con elevado riesgo biológico.

La tinción Ziehl-Neelsen es una tinción ácido-alcohol resistente (señala la respuesta INCORRECTA): Los microorganismos son alcohol-resistentes porque resisten la fijación con ácidos y alcoholes. Los microorganismos ácido-alcohol resistentes aparecen teñidos de rojo/rosa sobre fondo azul en esta tinción. Se utiliza el colorante de fucsina de Ziehl y Azul de Metileno. Se basa en que los microorganismos ácido-alcohol resistentes no se decoloran debido a que tienen ácidos grasos que lo impiden.

Las tinciones diferenciales se llaman así porque: Utilizan diferentes sustancias para colorear. Utilizan técnicas que difieren mucho de las técnicas clásicas de tinción de microorganismos. Permiten diferenciar entre grupos de bacterias por su color natural. Permiten diferenciar entre grupos de bacterias por su afinidad a diferentes colorantes.

Para la tinción de parásitos en heces se utiliza: Hidróxido sódico. Lugol. Azul de metileno. Safranina.

Para lograr teñir bacterias esporuladas usamos: Azul de metileno. Lugol. Verde malaquita. Ziehl-Neelsen modificado.

Para preparar un frotis bacteriano se debe seguir el siguiente orden: Fijado, coloración, lavado y secado único. Secado, fijación, coloración, lavado y secado final. Secado, coloración, fijación, lavado y secado final. Fijación, secado, coloración, lavado y secado final.

Para realizar y visualizar tinciones fluorescentes necesitamos: Bacterias con fluorescencia natural. Microscopios de fluorescencia. La tinción de Kinyoun. Microscopios electrónicos con luz fluorescente.

Parásitos sanguíneos como Leishmania y Trypanosoma pueden teñirse con: Auramina-rodamina. Ziehl-Neelsen. Verde malaquita. Giemsa.

Señala el orden correcto para realizar una tinción de Gram: Safranina, lugol, decolorante y cristal violeta. Cristal violeta, Lugol, safranina y decolorante. Cristal violeta, lugol, decolorante y safranina. Cristal violeta, decolorante, lugol y safranina.

Señala la respuesta incorrecta sobre el examen en fresco: Se puede realizar a partir de muestra sólida o líquida. Se puede apreciar con esta técnica la movilidad de Trichomonas vaginalis. Se fija la preparación. Se observa con el objetivo de x 40 y con poca luz.

Cuando preparamos medio de cultivo, uno de los pasos es autoclavarlo, ¿por qué se realiza este proceso?. Porque modifica el pH a unos valores adecuados para el crecimiento bacteriano. Realmente, no es necesario en todos los casos. Porque ayuda a gelificar el agar al calentar la disolución. Porque esteriliza el medio de cultivo y así se evita el crecimiento de bacterias indeseadas.

El agar SS es selectivo para: Pseudomonas. S. aureus. S. pyogenes. Salmonella spp.

El medio agar inclinado de Lowestein – Jensen/Coletsos se usa para aislar: Trichomonas. Levaduras. Campylobacter. Micobacterias.

El medio Chapman o manitol salado permite el crecimiento de: Solo S. aureus. Estafilococos, tanto S.aureus, como los coagulasa negativa. Estreptococos. Solo estafilococos distintos a S.aureus.

El medio CLED se usa para: Como agar para anaerobios. Como caldo de enriquecimiento. Como agar para cultivo de orina. Para aislar Haemophilus spp.

En relación con los medios de transporte, selecciona la afirmación FALSA: Suelen utilizarse viales o tubos donde se introduce la muestra directamente o por medio de una torunda o hisopo. Puede mantenerse sin refrigerar entre 12 y 24 horas. Contiene nutrientes para mantener vivas a las bacterias hasta que llegan al laboratorio. Contiene agar y agua para evitar la desecación de los microorganismos.

En relación con los medios líquidos, señala la respuesta incorrecta: Se suelen realizar en tubos de ensayo. No llevan agar. Permiten un mayor crecimiento bacteriano. Se utilizan para el aislamiento de bacterias.

En un medio de agar Hektoen, ¿a qué tipo de bacterias puede corresponder esta imagen?: Levaduras. Salmonella. E. coli. Shigella.

Para que un microorganismo crezca es necesario unas condiciones de cultivo determinadas, selecciona la respuesta incorrecta: Elementos como carbono, azufre, fosforo, etc. Una atmosfera rica en oxígeno (aerobia). Una temperatura determinada, normalmente entre 25 y 40°C. Un pH definido, normalmente cercano a la neutralidad.

Señala en cuál de estos agares se pueden observar la alfa, beta y gamma-hemólisis: Mycosel. CLED. Sangre. MacConkey.

¿Para qué se utiliza la siembra por picadura?. Para el estudio de la movilidad. Para almacenar colonias en poco tiempo. Para almacenar cultivos mixtos. Para realizar antibiograma.

¿Para qué sirve el asa de Digralsky?. Recuento de colonias. Realización de antibiograma. Siembra masiva en superficie. Todas las respuestas s son correctas.

¿Qué tipo de siembra es la siguiente?. Técnica de Barry. Siembra en masa. Siembra masiva en superficie. Siembra por aislamiento.

¿A qué nos referimos cuando hablamos de bacterias capnófilas?. A microorganismos aerobios que crecen bien en atmósfera enriquecida con 5-10 % de CO2. A los que no necesitan CO2 para vivir. A las bacterias anaerobias. A las bacterias que crecen a bajas temperaturas.

Al realizar el recuento de viables en placa…. Hay que tener en cuenta el factor de dilución. Contamos las células individuales. Es un método de recuento electrónico. No hay que contar colonias.

Cuando realizamos la siembra de microorganismos debemos seguir una serie de recomendaciones, ¿cuál de ellas es FALSA?. Los tubos abiertos deben mantenerse en posición inclinada para que el riesgo de contaminación sea mínimo. Las tapas de las placas Petri no deben colocarse nunca sobre la mesa de trabajo. Si las asas de siembra que se emplean no son desechables es imprescindible esterilizarlas flameándolas cada vez y enfriarlas antes de su reutilización. Las bocas de los tubos y placas de plástico se flamean ligeramente una vez destapadas.

De las siguientes muestras, ¿cuál rechazarías?. Muestras identificadas con código de barras. Muestra tomada con métodos invasivos con más de 24 horas de transporte. Muestra tomada con métodos invasivos en un envase inadecuado. Una muestra de vómito.

En relación a las colonias bacterianas que crecen sobres los medios de cultivo sólidos. Selecciona la afirmación verdadera: Cada colonia visible está formada por unas pocas bacterias. Todas tienen un aspecto blanquecino y redondeado. Es sinónimo de UFC. A partir de su morfología, color y textura se pueden identificar algunas especies de bacterias.

La siembra en masa o técnica de Barry se basa en: Siembras en superficie para posteriormente hacer recuentos. En hacer siembras en matraces tipo Erlenmeyer. Mezclar un volumen determinado de la muestra con uno del medio de cultivo y verterlo en la placa. Realizar la siembra en cuatro cuadrantes marcados en la placa.

Las jarras y bolsas de anaerobiosis se utilizan para: Para el aislamiento y transporte de microorganismos patógenos peligrosos. Para el cultivo de microorganismos microaerófilos, ya que los aísla del O2 atmosférico. El cultivo de microorganismos anaerobios, porque llevan unos reactivos que producen el agotamiento del O2. El cultivo de microorganismos aerobios, ya que los protege del CO2 atmosférico.